Il mito dell'intensità di corrente: perché 200 µA sul display non garantiscono 200 µA nei tessuti

Su molti dispositivi a microcorrente compare sul display un numero che sembra del tutto scontato: 200 microampere, ad esempio. Molti utenti ne deducono che proprio questa intensità di corrente scorra ora attraverso il tessuto del proprio paziente. Si tratta di un’ipotesi plausibile, poiché si desidera dosare la corrente e lavorare in modo riproducibile. Dal punto di vista fisico, tuttavia, essa regge solo in parte a un’analisi più approfondita.

Corrente, tensione, resistenza: tre grandezze, un unico rapporto

La legge di Ohm descrive questa relazione: l’intensità di corrente è pari alla tensione divisa per la resistenza (I = U / R). L’immagine di una tubatura dell’acqua rende chiaro il concetto. La corrente è la quantità d’acqua, la tensione è la pressione e la resistenza è il tubo. La quantità che scorre non dipende solo da quanto si desidera.

Un esempio di calcolo: per ottenere 200 µA, un dispositivo richiede una tensione di 10 V a 50 kΩ, già 30 V a 150 kΩ e 60 V a 300 kΩ. Tuttavia, per motivi di sicurezza, i dispositivi a microcorrente funzionano con una tensione di uscita limitata. Nel caso dell’HD2000+, essa è pari a un massimo di 60 V per canale. Se la resistenza supera tale valore, semplicemente non è possibile far scorrere 200 µA. Le istruzioni tecniche per l’uso dell’HD2000+ illustrano chiaramente questa relazione in una tabella: a 95 kΩ sono possibili al massimo circa 630 µA, a 350 kΩ ancora circa 170 µA (Luxxamed GmbH, 2025).

La catena di resistenza

La resistenza tra due elettrodi non è un valore unico, ma una catena. Ne fanno parte l’elettrodo stesso con il materiale, l’età e lo strato di gel, la zona di transizione dall’elettrodo alla pelle e lo strato corneo, che è un conduttore estremamente scarso. Solo successivamente si trova il tessuto vero e proprio, con il liquido tissutale, che è un buon conduttore, le fasce, che sono cattive conduttrici, e l’osso, che è un conduttore quasi nullo.

Questa catena, inoltre, cambia continuamente: a causa dell’umidità cutanea, del sudore, della temperatura e della ionizzazione dello strato superiore della pelle. Anche gonfiori o infiammazioni modificano il comportamento elettrico. La resistenza all’inizio di una seduta non è quindi la stessa che si riscontra dopo venti minuti.

L’importanza di questo aspetto è emersa anche in laboratorio. Durante gli studi in vitro condotti presso il Fraunhofer FEP con l’apparecchio HD1000, è stato necessario inserire un ponte di agar tra l’elettrodo e la coltura cellulare, in modo da riprodurre in parte la resistenza cutanea (Schönfelder et al., 2017, rapporto di progetto inedito).

Cosa hanno effettivamente misurato Cheng et al. (1982)

Lo studio di Cheng et al. (1982) è considerato uno dei lavori più citati sulla terapia a microcorrenti. Nella pelle dei ratti, le concentrazioni di ATP sono aumentate da tre a cinque volte con correnti continue comprese tra 50 e 1.000 µA. Al di sopra dei 1.000 µA l’effetto si è stabilizzato, mentre a 5.000 µA il valore dell’ATP era addirittura leggermente inferiore a quello del gruppo di controllo. Una maggiore corrente non comporta quindi automaticamente un effetto maggiore.

Meno nota è la parte relativa alla metodologia. Gli autori hanno utilizzato una sorgente di corrente costante e hanno determinato quale percentuale di corrente attraversasse effettivamente la pelle. La resistenza maggiore nel sistema è stata riscontrata nel punto di contatto tra l’elettrodo e la pelle. Con la pelle immersa nel bagno tampone, la corrente che attraversava il tessuto si stabilizzava a circa 6 µA al di sopra di circa 50 µA, mentre il resto scorreva attraverso la soluzione. Gli stessi autori sottolineano che solo una piccola parte della corrente applicata è responsabile degli effetti metabolici (Cheng et al., 1982). I valori spesso citati descrivono quindi la corrente impostata nel sistema sperimentale, non l’intensità di corrente nel tessuto.

Il corpo non è una semplice resistenza

Il tessuto biologico non si comporta come una resistenza ohmica. Le membrane cellulari sono sottili strati isolanti tra fluidi conduttivi e agiscono quindi come condensatori. Le fasce avvolgono e separano quasi tutte le strutture del corpo e contribuiscono anch’esse a questo comportamento capacitivo.

Ciò comporta due conseguenze pratiche. In primo luogo, l’intensità di corrente varia anche all’interno di un singolo impulso, poiché le componenti capacitive si caricano. In secondo luogo, la resistenza capacitiva dipende dalla frequenza: maggiore è la frequenza, minore è la resistenza. La frequenza e l’intensità di corrente non sono quindi parametri indipendenti l’uno dall’altro.

Regolazione e mantenimento

Ciò ha conseguenze anche dal punto di vista normativo. Il regolamento sui dispositivi medici richiede, in sostanza, che i prodotti che forniscono energia al paziente siano in grado di regolare e mantenere con sufficiente precisione la quantità erogata (Regolamento [EU] 2017/745, Allegato I, 21.1). Le prove tecniche vengono tipicamente eseguite su carichi di prova definiti. Un paziente, tuttavia, non è un carico di prova.

Misurare, regolare, misurare nuovamente

È qui che entra in gioco il principio del circuito di regolazione, descritto da Norbert Wiener (1948) con il termine «cibernetica». Il corpo umano stesso ne è un esempio: temperatura, pressione sanguigna e valore del pH vengono costantemente misurati e regolati. Una terapia a microcorrenti controllata dall’impedenza segue lo stesso principio. Con l’HD2000+, la resistenza tissutale viene misurata durante l’intera applicazione, e sia la tensione che l’intensità di corrente vengono regolate continuamente (LuXXaMed GmbH, 2025). È quindi possibile combinare protocolli specifici per frequenza.

Chi lavora con valori fissi può continuare a farlo. In questo caso, però, assumono particolare importanza l’utilizzo di elettrodi nuovi, una buona preparazione della pelle e una quantità sufficiente di gel. È fondamentale essere consapevoli che il numero visualizzato sul display è un valore di riferimento e non una garanzia.

Fonti

Cheng, N., Van Hoof, H., Bockx, E., Hoogmartens, M. J., Mulier, J. C., De Dijcker, F. J., Sansen, W. M., & De Loecker, W. (1982). Gli effetti delle correnti elettriche sulla produzione di ATP, sulla sintesi proteica e sul trasporto di membrana nella pelle dei ratti. Clinical Orthopaedics and Related Research, 171, 264–272.

Parlamento europeo e Consiglio dell’Unione europea. (2017). Regolamento (UE) 2017/745 sui dispositivi medici. Gazzetta ufficiale dell’Unione europea, L 117.

LuXXaMed GmbH. (2025). HD2000+ Istruzioni tecniche per l’uso, versione software 3.X (Rev. 23). Kassel.

Schönfelder, U., Walker, ?, & Kenner, ? (2017). [Unveröffentlichter Projektbericht] (Rapporto di progetto non pubblicato). Fraunhofer FEP.

Wiener, N. (1948). Cybernetics: Or control and communication in the animal and the machine. Technology Press; John Wiley & Sons.